Comparación de la calidad embrionaria entre fertilización in vitro (FIV) y cultivo intravaginal de ovocitos (INVO) en el Centro Colombiano de Fertilidad y Esterilidad - CECOLFES, Bogotá, Colombia
DOI:
https://doi.org/10.18597/rcog.175Resumen
Objetivo: comparar la calidad embrionaria y describir las tasas de implantación, embarazo y aborto en las técnicas de fertilización in vitro (FIV) y el cultivo intravaginal de ovocitos.
Materiales y métodos: cohortes históricas de pacientes con tratamiento de fertilización in vitro y el cultivo intravaginal de ovocitos en el Centro Colombiano de Fertilidad y Esterilidad (Cecolfes) durante el año 2010. Se incluyeron 137 pacientes aspiradas dentro de los cuatro grupos de estudio: Grupo 1, FIV/Incubadora; Grupo 2, FIV/INVO; Grupo 3, ICSI/INVO, y Grupo 4, ICSI/Incubadora. Se midió el peso de la paciente, el número de ovocitos recuperados y óvulos maduros (MII), la tasa de implantación y la tasa de embarazo y aborto en cada uno de los grupos. Se realizó análisis mediante la prueba de Kruskal-Wallis; la calidad embrionaria fue evaluada con un análisis de covarianza multivariado (MANOVA).
Resultados: se observó diferencia significativa en la calidad embrionaria entre las dos técnicas FIV e INVO (p = 0,0388). En la técnica INVO se presentaron mayores tasas de división embrionaria (µ = 7,35/INVO frente a 6,64/Incubadora) y menor fragmentación (µ = 4,67/INVO frente a 4,59/ Incubadora). En cuanto a la tasa de implantación, embarazo y aborto se obtuvieron más altos porcentajes en los grupos INVO.
Conclusión: la técnica INVO se asoció a mejor calidad embrionaria. Las tasas de implantación, embarazo y bajas tasas de aborto son semejantes a las descritas en la técnica FIV.
Biografía del autor/a
Doris Elena Navarro-Carbonell
Carlos Pulido-Torres
Ángela María Saa-Madriñan
Elkin Lucena-Quevedo
Referencias bibliográficas
Conard J, Plu-Bureau G, Horellou MH, Samama MM, Gompel A. Thrombosis and assisted reproductive techniques (ART). J Mal Vasc 2011;36:145-54.
Betts D, Madan P. Permanent embryo arrest: molecular and cellular concepts. Mol Hum Reprod 2008;14:8:445-453.
Brezinova J, Oborna I, Svobodova M, Fingerova, H. Evaluation of day one embryo quality and IVF outcome - a comparison of two scoring systems. RB & E 2009;7:9.
Favetta L, Madan P. Mastromonaco, G, St John EJ, King WA, Betts DH. The oxidative stress adaptor p66Shc is required for permanent embryo arrest in vitro. BMC Developmental Biology 2007;7:132.
Ragione T, Verheyen G, Papanikolaou E, van Landuyt L, Devroey P, van Steirteghem A. Developmental stage on day-5 and fragmentation rate on day-3 can influence the implantation potential of top-quality blastocysts in IVF cycles with single embryo transfer. RB & E 2007;5:2.
Qian YL, Ye YH, Xu CM, Jin F, Huang HF. Accuracy of a combined score of zygote and embryo morphology for selecting the best embryos for IVF. J Zhejiang U Sci B 2008;9:649-55.
Paternot G, Devroe J, Debrock S, D'Hooghe TM, Spiessens C. Intra-and Inter-observer analysis in the morphological assessment of early-stage embryos. Reprod Biol Endocrinol 2009;7:105.
Blockeel C, Mock P, Verheyen G, Bouche N, Le Goff P, Heyman Y, et al. An in vivo culture system for human embryos using an encapsulation technology a pilot study. Hum Reprod 2009;24:790-6.
Frydman R, Ranoux C. INVO: a simple, low cost effective assisted reproductive technology. ESHRE Monogr 2008;1:85-9.
Leese HJ, Baumann CG, Brison DR, McEvoy TG, Sturmey RG. Metabolism of the viable mammalian embryo: quietness revisited. Mol Hum Reprod 2008;14: 667-72.
Veeck L. An atlas of human gametes and conceptuses. New York: Parthenon Publishing Group; 1999.
Fukuda M, Fukuda K, Ranoux C. Unexpected low oxygen tension of intravaginal culture. Hum Reprod 1996;6:1293-5.
Kushnir V, Frattarelli J. Aneuploidy in abortuses following IVF and ICSI. J Assist Reprod Genet 2009;26(2-3):93-7.
Mohamad M, Fischer- Hammadeh C, Ali K. Assisted hatching in assisted reproduction: a state of the art. Assist Reprod Genet 2010;28:119-28.
Bain NT, Madan P, Betts DH. The early embryo response to intracellular reactive oxygen species is developmentally regulated. Reprod Fertil Dev 2011;23:561-75.
Agarwal A, Saleh RA, Bedaiwy MA. Role of reactive oxygen species in the pathophysiology of human reproduction. Fertil Steril 2003;79:829-43.
Gertz M, Fischer F, Leipelt M, Worlters D, Steegborn C. Identification of peroxiredoxin 1 as a novel interaction partner for the lifespan regulator protein p 66 Shc. Aging (Albany NY) 2009;1:254-65.
Fujii J, Iuchi Y, Okada F. Fundamental roles of reactive oxygen species and protective mechanisms in the female reproductive system. Reprod Biol Endocrinol 2005;3:43.
Harvey A. The role of oxygen in ruminant preimplantation embryo development and metabolism. Anim Reprod Sci 2007;98:113-28.
Urbina M. Fertilidad y reproducción asistida. Caracas: Panamericana; 2008.
Lucena E, Saa A, Navarro D, Pulido C, Lombana O, Moran A. INVO Procedure: minimally invasive IVF as an alternative treatment option for Infertile couples. Scientific World Journal 2012;2012:571-96.
Cómo citar
Descargas
Descargas
Publicado
Número
Sección
Estadísticas de artículo | |
---|---|
Vistas de resúmenes | |
Vistas de PDF | |
Descargas de PDF | |
Vistas de HTML | |
Otras vistas |